logo

Závěr: (popište růst anaerobů) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Středa Kitt-Tarozzi.

Závěr: (popište růst anaerobů) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Wilson-Blair ve středu.

Závěr: (popište růst anaerobů) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Středa Weinberg.

Závěr: (popište růst anaerobů) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Thioglykolové médium ("Médium pro kontrolu sterility").

Závěr: (popište růst anaerobů) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Datum přidání: 2015-04-04; zobrazení: 87; Porušení autorských práv

http://lektsii.com/1-134038.html

Mléko podle Tukaeva

Závěr: (popište růst anaerobů) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Středa Kitt-Tarozzi.

Závěr: (popište růst anaerobů) __________________________________________ ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

194.48.155.252 © studopedia.ru není autorem publikovaných materiálů. Ale poskytuje možnost bezplatného použití. Existuje porušení autorských práv? Napište nám Zpětná vazba.

Zakázat adBlock!
a obnovte stránku (F5)
velmi potřebné

http://studopedia.ru/5_69411_moloko-po-tukaevu.html

Populární diety

Tukayev mléko

Tukayev mléko

Kulturní vlastnosti mikroorganismů jsou rysy růstu mikroorganismů na hustém živném médiu.

Bakteriologická metoda - hlavní metoda diagnostiky infekčních onemocnění. Zahrnuje výsadbu studovaného materiálu na živné médium, izolaci čisté kultury a její identifikaci (výsev na hustá živná média, kapalná živná média, stanovení morfologické, tinktivní, kulturní, biochemické, antigenní, citlivosti na antibiotika, mikroorganismy ve studovaném materiálu). - stanovení typu a kmene mikroorganismu.)

Izolace čisté kultury je základem bakteriologické práce, protože v procesu aktivity se musí jednat s materiálem obsahujícím směs mikroorganismů a identifikace druhu je možná, když se bakterie získají v čisté, izolované formě.

Pro získání čisté kultury je nutné oddělit buňky různých druhů od sebe navzájem. Způsobem jejich separace existují dvě hlavní skupiny metod izolace čistých kultur:

Metody založené na mechanické separaci.

Metody založené na rozdílech v biologických vlastnostech.

Nejčastěji používanými metodami jsou mechanická separace bakteriálních buněk - speciální očkovací metody.

Technika výsevního materiálu na hustém živném médiu.

Získání izolovaných kolonií. Tvorba izolovaných kolonií se dosahuje mechanickou distribucí mikrobů během výsevu. Existuje několik způsobů výsevu.

Výsev podle metody Drigalsky vytvořené špachtlí do Petriho misky na pevném živném médiu. Dříve se kapka studované kultury zavede do středu média se smyčkou a pak se rozemele na celý povrch sterilní stěrkou.

Nasávání vyčerpávající mrtvice produkovat smyčku, pre-rozdělit Peri pohár do 4 stejných čtverců. Výsev začíná 1 čtvercovým paralelním tahem a končí na 4 čtvercích.

Získání růstu odtoku mohou být použity pro akumulaci výsledné kultury. Ve zkumavce se zkoseným agarem vytvořte smyčku s materiálem a vytvořte setí v klikatém pohybu směrem nahoru.

Druhá skupina metod pro získání čistých kultur mikroorganismů zahrnuje:

a) filtrování. Studovaný materiál prochází speciálními filtry s určitým průměrem pórů, a proto jsou mikroorganismy od sebe odděleny (například pro čištění virů z bakterií).

Biologické izolační metody jsou založeny na rozdílech v biologických vlastnostech mikroorganismů.

a) Shukevichova metoda - zkoumaný materiál se naočkuje do kondenzované vody z pokoseného agaru, zatímco mobilní formy mikroorganismů během reprodukce „tečou“ na povrch agaru z kondenzační vody (Proteus vulgaris). může získat čistou kulturu.

b) zahřívací metoda - zahřívejte materiál na 80 ° C ve vodní lázni po dobu 10-15 minut, zatímco vegetativní formy umírají a výtrusy zůstávají a klíčí, když jsou zasety na živné médium (metoda umožňuje separaci kultur spor od spór).

c) metoda chlazení - pěstování mikroorganismů při nízkých teplotách. Používá se k izolaci čistých kultur psychrofilních bakterií (mikroorganismy rodu Yersinia se pěstují při teplotě 5 ° C).

d) bakteriostatická metoda, při výsevu, se do výchozího materiálu přidávají některé chemické látky nebo antibiotika, které inhibují růst některých mikroorganismů, aniž by ovlivnily ostatní (penicilin zpomaluje růst mikroorganismů Gr + bez ovlivnění GR-, 5% H).2SO4 zabíjí většinu mikroorganismů, s výjimkou kyselinovzdorných (tuberkulózní patogen)

e) způsob obohacování na sdělovacích prostředcích

e) infekce laboratorních zvířat.

Schéma popisu kulturních vlastností mikroorganismů:

Výsev podle metody Drigalsky.

1. Připravte 3 Petriho misky se sterilním živným médiem.

2. Ve středu střední smyčky přidejte 1 kapku studované kultury.

3. Rovnoměrně otřete kapku špachtlí na povrch živného média v Petriho misce.

4. Bez spalování špachtle, materiál postupně přeneste do druhé třetí Petriho misky.

Na třetí Petriho misce po inkubaci by měly růst izolované kolonie mikroorganismů.

Výsev vyčerpávající mrtvice.

1. Připravte Petriho misku se sterilním živným médiem.

2. Rozdělte šálek Peri do 4 stejných čtverců.

3. Výsev se provádí smyčkou, počínaje 1 čtvercem s rovnoběžnými tahy a končícími na 4 čtvercích.

Tabulka Metody izolace čistých kultur mikroorganismů.

Metoda izolace čisté kultury

Schéma bakteriologické laboratorní diagnostické metody

Fáze I (nativní materiál): Mikroskopie.

Výsev na obohacujícím médiu nebo pevném živném médiu

Fáze II (izolované kolonie): Studium kulturních, tinktoriálních a morfologických vlastností. Výsev na šikmém živném agaru pro izolaci čisté kultury

Fáze III (čistá kultura): Identifikace vybrané kultury.

Závěr vybrané kultury

1. Co jsou to nutriční média a jaké jsou pro ně hlavní požadavky?

2. Jaká volitelná média víte? Pojmenujte jejich složení.

3. Jaké metody se používají k izolaci čistých kultur mikroorganismů?

4. Proč je v diagnostice infekčních onemocnění hlavní bakteriologická diagnostická metoda?

5. Pojmenujte základní schéma bakteriologického vyšetření.

6. Co určuje dobu trvání bakteriologického vyšetření?

Borisov LB, Smirnova AM, lékařská mikrobiologie, virologie, imunologie. M., lékařství. 1994

Vorobev AV, Bykov AS, Pashkov EP, Rybakova A. M. Mikrobiologie. M., Medicína. 1998

Korotyaev A. I., Babichev S. A., Medical Microbiology, Virology, Immunology. SpecLit, 2000

Borisov L. B. Průvodce praktickým cvičením v mikrobiologii. M. 1973

Pyatkin K.N., Krivoshein Yu.S. Mikrobiologie. M., 1980

Genkel PA, Mikrobiologie se základy virologie. M., 1974.

Schlegel G. Obecná mikrobiologie. M., Mir, 1982

Lekce 5 Fyziologie mikroorganismů. Biochemické vlastnosti mikroorganismů.

Cíl: Naučit se určovat čistotu vybrané kultury, provádět resekuční smyčku, zohlednit výsledky stanovení biochemických vlastností bakterií.

Znalosti: Schéma bakteriální metody pro diagnostiku infekčních onemocnění, metody vstupu živin do bakteriální buňky, metabolické vlastnosti bakteriální buňky, klasifikace a funkce enzymů, metody identifikace mikroorganismů.

Být schopen: Popsat biochemické vlastnosti bakterií a znovu získat čistou kulturu mikroorganismů a rozpoznat jejich biochemické vlastnosti.

Podstata tématu: Studium biochemických vlastností mikroorganismů je prováděno za účelem identifikace mikroorganismů, což je hlavní vazba v diagnostice infekčních onemocnění.

Otázky pro samostudium:

1. Výměna plastů a energie

2. Bakteriální výživa Způsoby dodávání živin do bakteriální buňky. Povoluje.

2. Bakteriální buněčné enzymy.

3. Identifikace a vnitrodruhová typizace.

4. Metody studia biochemických vlastností bakteriálních buněk.

1. Vlastnosti metabolismu bakteriální buňky.

2. Identifikace bakterií.

3. Studium biochemických vlastností mikroorganismů.

1. Nesetá "pestrá řada".

2. Možnosti změny "pestré série".

3. Klieglerovo nemodifikované a modifikované prostředí.

6 Mikrometoda studia biochemických vlastností bakterií. Identifikační štítky.

1. Studovat složení, účel a vzhled prostředí Guiss. Načrtněte možnosti změny "pestré série". Stanovte biochemickou aktivitu různých mikroorganismů v Hissově médiu.

2. Vyhodnoťte výsledky screeningu čisté kultury: poznamenejte si povahu růstu a přítomnost cizích bakterií.

3. Zajistěte čistotu vybrané kultury pomocí mikroskopie skvrny s barvením Gram.

4. Na podložní sklíčko vložte test katalázy.

5. Zohlednit výsledky stanovení biochemické aktivity vybraných čistých kultur na Kliglerově médiu.

6. Provádění naočkování materiálu na zkosenou MPA pro získání čisté kultury.

Metabolismus (metabolismus) - soubor procesů transformace látek a energie zaměřených na zachování a reprodukci života.

Úroveň metabolismu mikrobiální buňky je vyšší než u jiných organismů. Metabolismus kombinuje dva procesy: metabolismus plastů (anabolismus, asimilaci) a energetický metabolismus (katabolismus, disimilace).

Metabolismus plastů je konstruktivní metabolismus, při kterém dochází k reakcím syntézy molekul buněk mikroorganismu, což zajišťuje asimilaci látek z prostředí využívaného k budování buněčných struktur, což vyžaduje energii, kterou buňky získávají v důsledku energetického metabolismu.

Energetický metabolismus je rozklad živin (bílkovin, sacharidů, lipidů atd.). Tyto procesy mohou probíhat za aerobních nebo anaerobních podmínek. Katabolismus a anabolismus jsou vzájemně provázány.

V mikrobiální buňce je poměr povrchu k hmotnosti ve srovnání s jinými organismy velmi vysoký. Mikrobiální buňky mají obrovské množství enzymů.

. Posoudit biochemickou aktivitu bakterií pomocí následujících reakcí:

Fermentace - neúplné štěpení substrátu na meziprodukty.

Oxidace - kompletní štěpení substrátu na oxid uhličitý a vodu.

Recyklace - použití substrátu pro růst.

Tradiční způsob identifikace biochemickými vlastnostmi spočívá v setí čisté kultury na diferenciální diagnostická média obsahující specifické substráty, aby se posoudila schopnost mikroorganismu asimilovat daný substrát nebo určit konečné produkty jeho metabolismu.

Stanovení sacharolytické aktivity.

1. Stanovení biochemické aktivity výsevem v prostředí „pestré řady“. Krátká „pestrá řada“ zahrnuje Hisa tekutiny s mono- a disacharidy, glukózou, laktózou, sacharózou, maltózou a mannitolem. Kromě výše uvedeného obsahuje dlouhá „pestrá řada“ média s arabinózou, xylózou, galaktosou, glycerolem atd. Pro posouzení schopnosti bakterií fermentovat uhlohydráty do životního prostředí přidejte Andredův indikátor, který umožňuje detekci tvorby kyselých štěpných produktů a „float“ pro detekci plynu.

2. Stanovení biochemické aktivity v Kliglerově médiu. Médium Kligler je určeno pro stanovení fermentace glukózy, laktózy, uvolňování sirovodíku a vývoje plynu. Nalije se do zkumavek a seká se na polovinu. Kliglerovo inokulované médium je červené. Pokud po inkubaci změnila zkosená část média barvu z červené na žlutou, fermentuje se laktóza, pokud kolona agaru změní barvu z červené na žlutou, glukóza se fermentuje. Je-li v agarové koloně pozorováno zčernání, uvolňuje se sirovodík a dochází ke fermentaci glukózy. Pokud jsou v médiu plynové bubliny, uvolňuje se plyn během fermentačního procesu.

Stanovení proteolytických vlastností mikroorganismů.

Pro stanovení proteolytických enzymů se kultura provádí na želatině z masového peptonu, která se několik dní inkubuje při teplotě místnosti. V přítomnosti proteolytických enzymů zkapalňují bakterie želatinu.

Když je protein zničen, může být uvolněn amoniak, indol nebo sirovodík.

Reakce na amoniak. Indikátorem naneste proužek filtračního papíru impregnovaného indikátorem. S pozitivním výsledkem se papír zbarví modře.

Reakce na indol. Ehrlichova metoda: několik kapek Ehrlichova činidla se přidá do zkumavky s kulturou bakterií. V přítomnosti indolu se na povrchu objeví růžový prsten.

Reakce na sirovodík. Filtrační papír můžete použít se síranem železnatým. Když se sirovodík uvolní, papír se zbarví černě.

Detekce katalázy. Na skleněné sklíčko se nanese 1 až 2 kapky roztoku peroxidu vodíku a zavede se smyčka se studovanou kulturou. Uvolňování plynových bublin indikuje přítomnost katalázy.

Stanovení biochemické aktivity mikroorganismů pomocí Systému indikátorových papírů (SIBy)

Princip funkce: Disky vyrobené z filtračního papíru, nasycené živným médiem (živné médium + substrát + indikátor) a sušené, jsou uloženy v lahvích. V laboratoři jsou disky zlikvidovány ve sterilních zkumavkách a naplněny suspenzí studované kultury ve fyziologickém roztoku. Účetnictví se provádí po 18-24 hodinách inkubace v termostatu pro změnu barvy indikátoru.

Stanovení biochemické aktivity mikroorganismů pomocí panelů biochemické identifikace.

Princip působení: v otvorech speciálních plastových panelů jsou vhodná suchá média (živná báze + substrát + indikátor). V laboratoři se do jamek zavede suspenze studované kultury a po inkubaci (5-24 hodin) se zohlední výsledek změny barvy indikátoru.

Příklady: Panel biochemické diferenciace enterobakterií, panel biochemické diferenciace stafylokoků.

Automatizované identifikační systémy.

Princip činnosti je stejný jako v předchozím odstavci. Inkubace panelů, zaznamenávání výsledků a identifikace se provádí pomocí počítače.

Identifikace bakterií na základě biochemických znaků s využitím médií „pestré série“.

1. Čistá kultura studovaného mikroorganismu je zasazena do smyčky v prostředí „pestré řady“.

2. Plodiny se inkubují při teplotě 37 ° C po dobu 18 až 24 hodin nebo více.

3. V případě, že bakterie fermentují sacharidy před tvorbou kyselých produktů, dochází ke změně barvy média;

4. Při rozkladu uhlovodíků na kyselé a plynné produkty, spolu se změnou barvy, se v plováku objeví plynová bublina.

5. Pokud se použije médium s polotekutým agarem, vznik plynu se zaznamená prasknutím kolony.

Při nepřítomnosti fermentace se barva média nemění. Vzhledem k tomu, že bakterie nekvasí všechny, ale pouze sacharidy definované pro každý druh, který tvoří médium Giss, je pozorován poněkud pestrý obraz, proto se soubor médií se sacharidy a barevným indikátorem nazývá „pestrá řada“.

Identifikace bakterií na základě biochemických vlastností pomocí Kligleru

1. Čistá kultura studovaného mikroorganismu je nasazena smyčkou na prostředí Kligler

2. Plodiny se inkubují při teplotě 37 ° C po dobu 18 až 24 hodin.

3. V případě, že bakterie fermentují laktózu před tvorbou kyselých produktů, dochází ke změně barvy média z červené na žlutou v oblasti zkosené části.

4. V případě, že bakterie fermentují glukózu před tvorbou kyselých produktů, dochází v oblasti „kolony“ ke změně barvy média z červené na žlutou.

5. V případě, že bakterie vylučují sirovodík, je pozorována změna barvy média z červené na černou v oblasti „kolony“.

6. Při rozkladu uhlovodíků na kyselé a plynné produkty spolu se změnou barvy se ve vnitřku média objevují plynové bubliny.

Při nepřítomnosti fermentace se barva média nemění.

1. Pro co je identifikace mikroorganismů?

2. Jaké metody identifikace se nejčastěji používají v moderních bakteriologických laboratořích?

3. K čemu slouží „pestrý řádek“ a jaké je jeho složení?

4. Jaké jsou proteolytické vlastnosti? Jak je mohu identifikovat?

5. Co jsou SIB? Chcete-li zjistit, jaké bakterie se používají?

Borisov LB, Smirnova AM, lékařská mikrobiologie, virologie, imunologie. M., lékařství. 1994

Vorobev AV, Bykov AS, Pashkov EP, Rybakova A. M. Mikrobiologie. M., Medicína. 1998

Korotyaev A. I., Babichev S. A., Medical Microbiology, Virology, Immunology. SpecLit, 2000

Borisov L. B. Průvodce praktickým cvičením v mikrobiologii. M. 1973

Pyatkin K.N., Krivoshein Yu.S. Mikrobiologie. M., 1980

Genkel PA, Mikrobiologie se základy virologie. M., 1974.

Schlegel G. Obecná mikrobiologie. M., Mir, 1982

Lekce 6 Fyziologie mikroorganismů. Dech mikroorganismů. Anaerobes. Kultivační metody. Vliv faktorů prostředí na mikroorganismy. Dezinfekce. Sterilizace.

Cíl studie: Zkoumat principy tvorby prostředí pro anaeroby a metody jejich pěstování, hlavní metody sterilizace a dezinfekce a vybavení, které se k tomu používá.

Znalosti: Vlastnosti dýchání mikroorganismů, hlavní metody izolace čistých kultur anaerobů, složení živných médií používaných k pěstování anaerobů, metody kontroly dezinfekce a sterilizace.

Být schopen: Popsat kulturní vlastnosti anaerobních bakterií a být schopen zvolit způsob dezinfekce a sterilizace v závislosti na vlastnostech předmětu.

Zdůvodnění tématu: Anaerobi jsou původci mnoha nemocí, neboť jejich diagnóza vyžaduje specifické metody kultivace.

Otázky pro samostudium:

1. Respirační řetězce mikroorganismů.

2. Klasifikace mikroorganismů podle typu dýchání.

3. Vlastnosti živných médií pro anaeroby.

4. Vytváření podmínek pro kultivaci anaerobů.

5. Metody izolace čisté kultury anaerobů.

6. Sterilizace a dezinfekce.

7. Kontrola kvality dezinfekce a sterilizace.

1. Studium živných médií pro anaeroby: médium Kita-Tarozzi, médium Wilson Blair, médium Thioglykolové, médium Weintberg, agar Zeissler, mléko podle Tukaeva.

2. Popis kulturních vlastností anaerobů.

3. Prozkoumání způsobů, jak vytvořit anaerobní podmínky.

4. Metody sterilizace; pro sterilizaci.

5. Dezinfekční metody.

6. Metody sledování účinnosti sterilizace a dezinfekce.

1. Živná média - médium Kita-Tarozzi, médium Wilson-Blair, médium Thioglykolové, médium Weintberg, agar Zeissler.

2. Možnosti růstu anaerobů na těchto živných médiích.

3. Eksikator, anaerostat.

4. Přístroje používané ke sterilizaci.

1. Načrtněte a zaznamenejte složení a účel živných médií: médium Kita-Tarozzi, médium Wilson-Blair, médium Thioglykolové, médium Weintberg, mléko Tukayev, agar Zeissler.

2. Popište rysy růstu anaerobů na živných médiích.

3. Vezměte v úvahu výsledky experimentů stanovených pro kontrolu sterilizace. Uzavřete závěr. Vyplňte tabulku: Metody monitorování způsobu sterilizace.

4. Stanovte antibakteriální účinek UV záření na stafylokoky pomocí hotových plodin.

5. Vyplňte tabulku: Základní metody dezinfekce a kontroly kvality dezinfekce.

6. Zhodnoťte výsledky výsadebního materiálu na zkosené MPA.

Živné médium pro pěstování anaerobů:

Středa Wilson-Blair (železitý sulfitový agar) připravený z živného agaru, ke kterému je přidána glukóza, siřičitan sodný, chlorid železitý (2). Anaerobní klostridie na tomto médiu tvoří černé kolonie díky redukci siřičitanu sodného na sulfid, který v kombinaci s chloridem železitým poskytuje černou sraženinu.

Středa Kitta-Tarozzi. Skládá se z živné půdy, 0,5% glukózy a jater. Po setí nalijte médium malou vrstvou vazelínového oleje.

Tioglykolový bujón s heminem (volitelné médium pro kultivaci anaerobů tvořících spory). Obsahuje hemin, hydrolyzát kaseinu, glukózu, cystein, síran sodný, chlorid sodný, thioglykolát sodný.

Agar pro krevní cukr Zeissler. Skládá se z živného agaru, 1-2% glukózy, defibrinované krve.

Středa Weinberg. Obsahuje živný agar, játra, fosforečnan sodný, 0,5% glukózu, kyselinu chlorovodíkovou.

Sterilizace (oblozhivaniya, "sterilis" - neplodná) - úplné zničení předmětu ze všech mikroorganismů, které jsou ve vegetativních i spórových formách. Fyzikální metody se používají hlavně pro sterilizaci: sterilizaci v sušárně-sterilizační skříňce, parní sterilizaci, tindalizaci, autoklávování, kalcinaci, vystavení ionizujícímu záření, var. Sterilizační metody

1. Fyzikální metody. Existují různé metody sterilizace při vysoké teplotě.

1. Kalcinace v plamenech (duchová lampa) - používá se k sterilizaci bakteriologických smyček, pitevních jehel, sklíček, pinzet.

2. Var se používá jen zřídka. Varením ve vodě po dobu 10–40 minut lze sterilizovat opakovaně použitelné stříkačky a jehly.

3. Sterilizace suchým teplem se provádí v pecích Pasteur. Pro tento účel se dnes používají skříně suchého tepla různých značek. Nejjednodušší Pasteurská pec se skládá z dvouvrstvé kovové nádrže vybavené teploměrem pro regulaci teploty a topného článku.

Správně připravený materiál se umístí do sušárny a sterilizuje se 45 minut při teplotě 165 až 170 ° C. Zkumavky, baňky, lahve uzavřené vatovými zátkami.

4. Parní sterilizace se provádí při nižší teplotě, než je sterilizace suchým teplem, a provádí se při teplotě 100 až 120 ° C.

1) parní sterilizace pod tlakem

2) sterilizace parou.

Sterilizace páry pod tlakem - na základě skutečnosti, že výsledná pára nevypadá, ale hromadí se v uzavřeném prostoru a zvyšuje tlak. Proto tlak stoupá a bod varu vody; se zvýšením tlaku 1 atm. Bod varu bude 120 °, se zvýšením tlaku o 2 atm - 134,18 °, atd. Při této teplotě mikroorganismy a jejich spóry umírají velmi rychle (při 120 ° během 15–20 minut).

Tento způsob sterilizace se používá k výrobě živných médií, laboratorního skla, kovových a skleněných nástrojů, k dezinfekci infekčního materiálu.

Sterilizace páry pod tlakem v autoklávech. Dnes je to nejběžnější způsob sterilizace v bakteriologické praxi.

Autokláv je kovová válcová nádoba s tlustými dvojitými stěnami as hermeticky uzavřeným masivním víčkem. Autokláv je vybaven manometrem a teploměrem pro monitorování tlaku a teploty. Pod dnem autoklávu jsou topné články. Sterilizované předměty jsou umístěny uvnitř nádoby a pevně uzavřeny víkem, začíná se zvyšovat tlak a teplota.

Sterilizace kapalnou párou se provádí v přístroji Koch (obr. 38), což je vysoce kovový válec, s dvojitým dnem a víkem s volným kováním, vybaveným teploměrem. Na dně přístroje nalijte vodu, zahřátou od dna do varu. Výsledná pára se uvolní přes hrany těsně uzavřeného víka. Sterilizace se provádí do 30-40 minut po uvolnění páry.

Parní sterilizace může být také provedena v autoklávu; v tomto případě zůstane víko autoklávu odšroubováno a výfukový ventil je otevřen. Parní sterilizované předměty, které se zhoršují působením vysoké teploty (živné médium).

Jediné ošetření tekutou párou nezajišťuje úplnou sterilizaci, protože vegetativní formy umírají při teplotě 100 ° C, ale ne bakteriálních spór. Plné dehydratace pomocí kapalných par se dosahuje opakovanou (frakční) sterilizací.

Frakční sterilizace. Frakční sterilizace se aplikuje na materiály, které netolerují teploty nad 100 ° C (želatina, mléko, živná média s uhlovodany). Při teplotě 100 ° C umírají vegetativní formy bakterií, zbývající výtrusy pak nechají klíčit do vegetativních forem a materiál je opět sterilizován při teplotě 100 ° C za den. Zbývající spóry se nechají znovu klíčit a po jednom dni se materiál znovu sterilizuje při 100 ° C, čímž se dosáhne 100% sterilizace.

Tyndalizace je frakční sterilizace při nízkých teplotách navrhovaná Tyndallem pro předměty, které netolerují teploty 100 °. Jsou zahřívány po dobu 5-6 dnů v řadě při nižší teplotě (56-60 ° C) po dobu 1 hodiny denně. Tindalizace se provádí buď ve vodní lázni nebo ve speciálních zařízeních s termostaty.

Pasterizace. Metoda navržená Pasteurem pro částečnou sterilizaci kapalin, které ztratí své vlastnosti při působení vysoké teploty, se používá při teplotním zpracování potravin (džusy, mléko, víno). Metoda je založena na skutečnosti, že když je tekutina zahřívána na 50–60 ° po dobu 15–30 minut nebo na 70–80 ° C po dobu 5-10 minut, většina nekontrolovaných mikrobů umírá a spory zůstávají životaschopné. Proto je nezbytnou podmínkou balení a chlazení pasterizovaného produktu.

http://marmolesreynoso.com/moloko-po-tukaevu/

Legislativní základna Ruské federace

Bezplatné konzultace
Navigace
Federální právní předpisy

Akce

  • Domů
  • "METODICKÉ INDIKACE O SANITÁRNÍ MIKROBIOLOGICKÉ ANALÝZE LÉKAŘSKÝCH MLÉKŮ" (schváleno Ministerstvem zdravotnictví SSSR 11.09.89 N 143-9 / 316-17)
  • V době zařazení do databáze nebyl dokument publikován

Příloha N 3. PŘÍJEM NUTRIENTNÍCH MÉDIÍ

1. Médium pro stanovení bakterií ze skupiny Escherichia coli

Příprava média pro laktózový peptid:

a) normální koncentrace: 10 g peptonu, 5 g chloridu sodného (NaCl), 5 g laktózy se rozpustí při zahřátí v 1000 ml destilované vody pH 7,4-7,6. Nalijte 10 ml do zkumavek a sterilizujte v autoklávu při 112 ° C. C (0,5 kgf / m2 Cm) ​​30 minut;

b) koncentrované: připravené stejným způsobem jako médium s normální koncentrací, ale přidáním destilované vody na 1000 ml destilované vody 50 g NaCl, 50 g laktózy, 100 g peptonu.

2. Příprava polotekutiny s laktózou

V 1000 ml destilované vody se rozpustí 10 g peptonu, 5 g chloridu sodného, ​​4 až 5 g agaru a směs se uvede do varu, hodnota pH se upraví na 7,2 až 7,4; Přidá se 1 ml 1,6% alkoholového roztoku bromthymolové modři. Sterilizováno při 120 stupních. +/- 2 stupně C po dobu 20 minut. 5 g laktózy se zavede do roztaveného média zahřátého k varu. Nalije se do sterilních zkumavek s výškou sloupce 3 cm a sterilizuje se při 112 stupních. C (0,5 kgf / m2 Cm) ​​12 minut. Doba skladování není delší než 2 týdny.

Příprava polotekutého média s laktózou ze suchého přípravku s BP - dle receptury na etiketě. Skladovatelnost - ne déle než 7 dnů.

3. Příprava média Endo (modifikace)

Připraven ze suchého přípravku podle receptury na etiketě. Šálky před výsevem se suší v termostatu. Doba použitelnosti - ne více než dva dny ve tmě. V připravené a ochlazené na 60-70 stupňů. Médium C před nalitím do šálků do 20-25 ml se přidá k 100 ml média: 0,2 ml 100% roztoku zásaditého fuchsinu pro zvýšení diferenciačních vlastností média a 0,2 ml 5% alkoholového roztoku kyseliny rosolové, aby se zabránilo přerůstání plodin pomocí aerobů spór. Před výsevem musí být šálky s médiem vysušeny. Doba použitelnosti roztoku fuchsinu a kyseliny rosolové není delší než jeden měsíc.

4. Příprava pufrovacího média kyseliny borité

10 g peptonu, 12,2 g disubstituovaného fosforečnanu draselného (bezvodého), 4,1 g monosubstituovaného fosforečnanu draselného (bezvodého), 4,1 g monosubstituovaného fosforečnanu draselného (bezvodého), 3,2 g kyseliny borité (vyžaduje přesné vážení). g laktózy se rozpustí v 1 litru destilované vody, nalije se do 5 ml ve zkumavkách s plováky, sterilizovaných při teplotě 112 ° C. S 0,5 kgf / sq. cm 12 minut. Doba použitelnosti - ne déle než dva týdny. Doporučuje se každá nová šarže média zkontrolovat kmen E. Coli.

5. Příprava činidel pro stanovení oxidázové aktivity bakterií

30 až 40 mg alfa-naftolu se rozpustí v 2,5 ml rektifikovaného ethylalkoholu, přidá se 7,5 ml destilované vody a rozpustí se 40 až 60 mg dimethyl-fenylendiaminu. Roztok se připraví bezprostředně před stanovením.

6. Vaření nutričního agaru

Připraven ze suchého přípravku podle receptury na etiketě, sterilizován při 120 ° C. C (1 kgf / m2 Cm) ​​30 minut.

7. Vaření Wilsonova-Blairova média

Do 100 ml roztaveného roztoku se potom ochladí na teplotu 80 ° C. S alkalickým živným agarem s 1% glukózou se přidá 10 ml 20% roztoku siřičitanu sodného a 1 ml 8% roztoku chloridu železitého. Lze použít běžný živný agar, ale před použitím se přidá 10 ml 25% glukózy a 0,5 ml 10% alkálie. Vodné roztoky solí se připraví se sterilní destilovanou vodou a sterilizují se po dobu jedné hodiny proudem páry. Sířičitan sodný může být nahrazen síranem sodným a síran železitý může být nahrazen síranem.

8. Příprava prostředí pro stanovení oxidace a fermentace (OF) (středa Hugh-Leifson)

Ke 100 ml destilované vody se přidá 0,2 g peptonu, 0,5 g chloridu sodného, ​​0,03 g K2HP04, 0,3 g agaru, 1 g uhlohydrátu (glukóza, fruktóza), 0,3 ml 1% vodného roztoku. roztok bromthymolu. Médium se vaří až do úplného rozpuštění složek, hodnota pH se nastaví na 7,0 - 7,2, nalije se 3-4 ml do zkumavek, sterilizuje se při 112 ° C. C (0,5 kgf / m2 Cm) ​​15 minut. Ochlaďte barem.

9. Prostředí "Shine" a "King-A" pro identifikaci P. aeruginosa

9.1. Středa "Shine". Sterilní 2% agar s masovým peptonem 100 ml, sterilní mléko odebrané 10 ml, 10% vodný roztok trifenyltetrazolchloridu 8 ml, hydrochlorid argininu 0,3 g. Přidá se roztok argininu, trifenyltetrazolchloridu (po sterilizaci po skladování). při pokojové teplotě po dobu 2-3 dnů) a sterilní odstředěné mléko promíchejte a nalijte do 6-7 šálků.

9.2. Středa King-A. Pepton 2 g, agar-agar 1,5 g, glycerol 1,0 g, síran draselný 1,0 g, chlorid hořečnatý 0,14 g, destilovaná voda do 100 ml, pH 7,2. Sterilizujte při 112 stupních. C (0,5 kgf / m2 Cm) ​​po dobu 15 minut, nalijte do 6 šálků.

10. Varné prostředí Turchinsky

K 600 ml destilované vody se přidá 400 ml žluči, 35-40 g suchého živného agaru, 5 g fosforečnanu draselného monosubstituovaného a disubstituovaného, ​​5 g fosforečnanu sodného. Po zahřátí se roztaví, nalije do lahvičky a sterilizuje při 120 ° C. C (1 kgf / m2 Cm) ​​20 minut. Před použitím v roztaveném a chlazeném agaru přidejte každých 100 ml média 0,5 g glukózy; 1 ml 1% vodného roztoku TTX, 0,6 ml 1% vodného roztoku methylenové modři (uchovávaného po dobu nejvýše 14 dnů), 20 000 IU polymyxinu M, 1 až 2 ml 0,1% alkoholového roztoku furacilinu. Důkladně promíchejte, nalijte do Petriho misky se silnou vrstvou 20-25 ml.

11. Příprava prostředí inhibujícího mléko (IIA) t

Živný agar 85 ml, sterilní odstředěné mléko 15 ml, 0,01% roztok krystalické vody fialové 1,25 ml, 2% vodný roztok teluritu draselného 1 ml. Vše dobře promíchejte a nalijte do Petriho misek.

12. Gregersenův test

Jednoduchý, rychlý způsob, jak nahradit Gramovo zbarvení a nevyžaduje optiku.

V kapce 3% roztoku KOH na sklíčku emulgujte bakteriální hmotu odebranou z hustého média. Po několika sekundách se míchají smyčkou, suspenze se uvolní a sliznicová vlákna se protáhnou smyčkou, což naznačuje, že testované mikroorganismy patří k gram-negativním. V grampozitivních mikroorganismech je reakce negativní.

13. Mléko podle Tukaeva

K 1% peptonové vodě se přidá 5-6% odstředěného mléka, médium se sterilizuje při 112 stupních. C (0,5 kgf / m2 Cm) ​​12 minut.

14. Test katalázy

Na skleněné sklíčko se nanese kapka 3% roztoku peroxidu vodíku a nanese se smyčka testované kultury. V přítomnosti katalázy se tvoří vodíkové bubliny.

15. Příprava agaru s mléčným žloutkem (OIL) t

Suchý živný agar podle receptury na etiketě a 90 g chloridu sodného se rozpustí zahřátím v 1000 ml destilované vody, nalije do nádob a sterilizuje při 120 ° C. S 20 minutami.

Před použitím roztavit a ochladit na 50-55 stupňů. Se solným agarem přidejte:

- sterilní odstředěné mléko - 60 ml;

- jeden vaječný žloutek, důkladně promíchaný s 50 ml fyziologického roztoku pomocí skleněných perliček;

- polymyxin M (roztok se uchovává po dobu ne delší než 14 dnů) 300 000 U (pokud existuje vnější růst).

Důkladně promíchejte a nalijte do Petriho misek.

http://zakonbase.ru/content/part/645254

Práce 5: Prostředí pro pěstování anaerobů

1. Zeisslerovo médium (glukóza - krevní agar) v Petriho misce

2. Středa Kitt-Tarozzi (cukrový vývar, kousky parenchymatózních orgánů, vysoký sloupec, vrstva vazelínového oleje).

počáteční růst

3. Wilson-Blairovo médium - siřičitanový agar (3% MPA + 1% glukóza + 20% siřičitan sodný + 8% chlorid železitý) se nalije do vysoké kolony na horní straně vazelínového oleje. Umožňuje identifikovat aktivitu sirovodíku

počáteční růst.

4. Tioglykolové médium - používá se jak kapalné, tak polotekuté a husté.

5. Mléko podle Tukaeva (1% peptonová voda + 5% odstředěné mléko) se používá k detekci proteolytické aktivity bakterií.

Práce 6: Růst anaerobů při výsevu na mléko.

Většina anaerobů způsobuje krvácení.

Chcete-li připravit nátěr sterilní bakteriologickou smyčkou, vezměte obsah zkumavky ze dna zkumavky. Barva Gram. Clostridiums jsou velké Gram (+) tyčinky s undyed terminální nebo subterminální spory.

Práce číslo 7: Rozdělení čisté kultury anaerobů.

Fáze I Studie studovaného materiálu: a) mikroskopie, b) naočkování do 5 zkumavek s médiem Kitt-Tarozzi (ihned po zahřátí na vodní lázni při teplotě t 80 ° C po dobu 15-20 minut a rychlým ochlazením).

Fáze II. Studium kulturních vlastností (povaha změn v prostředí Kitt-Tarozzi) a získání izolovaných kolonií metodou Weinberg (ředění v roztaveném agaru s cukrem, následované umístěním do zkumavek Weyon-Vignale) -

http://studfiles.net/preview/4333291/page:12/

Morfologie, fyziologie, genetika a ekologie mikroorganismů (str. 4)

2. Plazmokoaguláza - kolaps plazmy.

Výsev se provádí v 0,5 ml krevní plazmy králíků.

3. Hemolysin - toxin, který štěpí červené krvinky.

Stanoveno na krevním agaru (CA)

4. Fibrinolizin - toxin, tající fibrin.

Stanoveno naočkováním v koagulované krvi.

krevní sraženina lýza sraženina

Práce číslo 4: Způsoby vytvoření anaerobních podmínek.

Princip metody Peretz:

Princip metody Fortner:

Trubky Veyon-Vinyal Princip:

Práce 5: Prostředí pro pěstování anaerobů

1. Zeisslerovo médium (glukóza - krevní agar) v Petriho misce

2. Středa Kitt-Tarozzi (cukrový vývar, kousky parenchymatózních orgánů, vysoký sloupec, vrstva vazelínového oleje).

počáteční růst

3. Wilson-Blairovo médium - siřičitanový agar (3% MPA + 1% glukóza + 20% siřičitan sodný + 8% chlorid železitý) se nalije do vysoké kolony na horní straně vazelínového oleje. Umožňuje identifikovat aktivitu sirovodíku

počáteční růst.

4. Tioglykolové médium - používá se jak kapalné, tak polotekuté a husté.

5. Mléko podle Tukaeva (1% peptonová voda + 5% odstředěné mléko) se používá k detekci proteolytické aktivity bakterií.

Práce 6: Růst anaerobů při výsevu na mléko.

Většina anaerobů způsobuje krvácení.

Chcete-li připravit nátěr sterilní bakteriologickou smyčkou, vezměte obsah zkumavky ze dna zkumavky. Barva Gram. Clostridiums jsou velké Gram (+) tyčinky s undyed terminální nebo subterminální spory.

Práce číslo 7: Rozdělení čisté kultury anaerobů.

Fáze I Studie studovaného materiálu: a) mikroskopie, b) očkování v 5 zkumavkách s médiem Kitt-Tarozzi (ihned po zahřátí na vodní lázni při teplotě t 80 ° C po dobu 15-20 minut a rychlým ochlazením).

Fáze II. Studium kulturních vlastností (povaha změn v prostředí Kitt-Tarozzi) a získání izolovaných kolonií metodou Weinberg (ředění v roztaveném agaru s cukrem, následované umístěním do zkumavek Weyon-Vignale) -

nebo metodou Zeissler (setí s disociací na glukózu -

Fáze III. Studium kolonií. Pád ve středu Kitt-Tarozzi pro hromadění čisté kultury.

Fáze IV. Objevování čisté kultury

a) morfologické a tinktivní vlastnosti - nátěr obarvený Gramem, Hinsem, Ozheshkem;

b) biochemická - „pestrá“ řada, výsev do mléka, na Wilsonově-Blairově médiu atd.,

c) antigenní a toxigenní vlastnosti - u laboratorních zvířat.

Stupeň V Záznam výsledků Závěr na formuláři.

Práce číslo 8: Studium vybrané čisté kultury.

1. Kulturní vlastnosti:

2. Morfologické a tinktivní vlastnosti v gramovém skvrně:

Další informace.
Otázky pro sebeovládání:

1. Faktory agrese.

2. Enzymy v závislosti na substrátu v médiu.

3. Klasifikace enzymů podle směru působení.

4. Použití mikrobiálních enzymů.

5. Prostředí pro identifikaci faktorů patogenity.

6. Složení a účel prostředí ZhSA.

7. Způsoby získání izolovaných anaerobních kolonií.

8. Principy tvorby anaerobních podmínek v prostředí Kitt-Torozzi.

10. Způsob získávání energie z povinných anaerobů.

11. Metody tvorby anaerobních podmínek.

12. Tekutá média pro kultivaci anaerobů.

13. Středa Wilson-Blair.

14. Chemické metody tvorby anaerobních podmínek.

15. V jakých prostředích jsou izolovány anaerobní kolonie?

16. Jak vznikají anaerobní podmínky v mikroaostatu?

17. Konečné produkty rozkladu proteinů.

18. Jak odhalit vznik sirovodíku, indolu, amoniaku?

19. Činidla pro detekci sirovodíku, indolu, amoniaku.

20. Prostředí ke studiu sacharolytických vlastností bakterií.

21. Média obsahující laktózu.

22. Jak vypadají lakové (+) kolonie na prostředí Endo, Levin, Ploskirev?

23. Konečné produkty členění sacharidů.

24. Složení a účel prostředí Rappoport.

25. Rozlišení složky životního prostředí Rappoport.

26. Prostředí pro studium proteolytických vlastností.

27. Vlastnosti povinných anaerobů.

28. Biologické metody tvorby anaerobních podmínek.

29. Fáze II izolace čisté kultury anaerobů.

30. Prostředí pro pěstování anaerobů (tekuté a husté).

31. Chemické metody tvorby anaerobních podmínek.

32. Účel a princip provozu trubek Veyon-Vignal.

33. Jaké bakterie mohou existovat bez kyslíku?

34. Životní prostředí pro pěstování anaerobů.

Jak vznikají anaerobní podmínky v exsikátoru?

36. Složení a použití krevního agaru.

37. II I fáze izolace čisté kultury anaerobů.

38. Složení a účel prostředí Zeissler.

39. Jak anaerobní podmínky vznikají ve Fortnerově metodě.

40. Principy anaerobních podmínek v prostředí Kitt-Torozzi.

Laboratorní lekce číslo 7

Téma: KULTIVACE A INDIKACE VIRUSŮ.

Cíl: Přizpůsobit metody kultivace a zobrazování virů,

metody získávání a titrace bakteriofágů a jejich

OTÁZKY PRO ŠKOLENÍ:

1. Hodnota objevu. Fáze vývoje virologie, role domácích vědců ve vývoji virologie.

2. Struktura a chemické složení virů a bakteriofágů.

3. Typy interakce viru s buňkou, stadia reprodukce, výsledky.

4. Metody kultivace virů. Indikace virů.

5. Bakteriofágy. Fágová interakce s buňkou. Střední a virulentní fágy. Lysogeny

6. Produkce a titrace fágů. Využití fágů v medicíně, mikrobiologii a biotechnologii.

7. Vnitřní identifikace bakterií (biovary, serovary, fagovary atd.). Epidemické značení.

1. Ovoskopie kuřecího embrya, infikujte ji

očkovaného materiálu. Proveďte pitvu dříve infikovaného embrya, vizuálně vyhodnoťte stav membrán.

2. Popište typy buněčných kultur, jejich rozdíly.

3. Studium živných médií pro buněčné kultury: Hanks, Needle, 199.

4. Studovat a načrtnout metody zobrazování virů:

a) cytopatický efekt - mikroskopie a náčrtek kultur fibroblastů v normálu as JRS;

b) hemaglutinační test - dal RSA, aby označil virus v testovaném materiálu, vyhodnotil a načrtl;

c) hemadsorpční reakce - čerpat z tabulky;

d) inkluze v postižených buňkách - načrtnutí Babesh-Negri tele s vzteklinou, Guarnieri tele s neštovicemi, intranukleární inkluze s adenovirovou infekcí z tabulek;

e) reakce tvorby plaku - z tabulky;

f) „barevný test“ - načrtnutí a vyhodnocení dokončené reakce.

5. Demontujte vlastnosti konstrukce a načrtněte strukturu

6. Popište způsob získání bakteriofágu.

7. Zvažte a načrtněte výsledky titrace fágu Appelman

8. Vezměte v úvahu a načrtněte konečné výsledky fagodiagnostiky: reakce

fagolýzu a fagotypizaci.

9. Popište fágové přípravky používané pro diagnostiku, léčbu

a prevenci nemocí.

10. Čištění pracoviště.

11. Zabezpečení protokolu.

Práce číslo 1: Technika ovoskopie, infekce a otevření kuřete

Ovoscopy: umístěte embryo na ovoscope a vyznačte hranici vzduchové dutiny tužkou.

Struktura 12denního kuřecího embrya

vzduch chorion - alantoic

shell dutiny (HAO)

embryonální alantoické dutiny

plodový žloutkový váček

Infekce: skořápka nad vzduchovou dutinou je otřena alkoholem, spálena na ohni, potřena 2% tinkturou jódu, znovu otřena alkoholem a spálena. Pro infikování XAD zakřivenými nůžkami, řezání skořápek přes vzduchovou dutinu, odstranění části membránového pláště pinzetou, materiál, který má být zkoumán v objemu ________, je aplikován na XAO (konec jehly by neměl být pod hranicí vzduchové dutiny). Otvor ve skořápce je pokryt krycím sklem a naplněn voskem nebo parafínem.

Pro infekci je jehla injekční stříkačky vložena do alantoidní dutiny přes propíchnutí ve skořápce, takže konec jehly je nižší než hladina vzduchové dutiny _ _ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ __ Otvor ve skořápce se nalije voskem.

Otevření kuřecích embryí se provádí v souladu s pravidly asepsy. Skořápka nad vzduchovou dutinou se zpracovává stejným způsobem jako při infekci a řezá se nůžkami těsně nad hranicí připojení choriové alantoidní membrány. Vizuálně vyhodnoťte stav HAO (zákal, přítomnost plaků atd.). Alantoická tekutina nasávaná pipetou po propíchnutí HAO v místě bez velkých krevních cév. Pak se HAO rozřízne nůžkami a celý obsah se nalije do Petriho misky otvorem. Amniotický vak je také řezán, uvolněn z embrya, skenován na léze.

Práce číslo 2: Buněčná kultura pro kultivaci virů.

http://pandia.ru/text/79/367/40408-4.php

Práce číslo 4: Způsoby vytvoření anaerobních podmínek

Princip metody Peretz:

Fortnerova metoda Princip:

Metoda Horovets-Vlasov

Vejonovy vignální trubice Princip:

Práce 5: Prostředí pro pěstování anaerobů

1. Médium Zeissler (glukóza - krevní agar) v Petriho misce

2. sredKita-Tarozzi (cukrový bujón, kousky parenchymatózních orgánů, vysoký sloupec, vrstva vazelínového oleje).

počáteční růst

3. Wilson-Blairovo médium - siřičitanový agar (3% MPA + 1% glukóza + 20% siřičitan sodný + 8% chlorid železitý) se nalije do vysoké kolony na horní straně vazelínového oleje. Umožňuje identifikovat aktivitu sirovodíku

počáteční růst.

4. Tioglykolové médium - používá se jako kapalina a polotekuté a husté.

5. Mléko podle Tukaeva (1% peptonová voda + 5% odstředěné mléko) se používá k detekci proteolytické aktivity bakterií.

Práce 6: Růst anaerobů při výsevu na mléko

Většina anaerobů způsobuje krvácení.

Chcete-li připravit nátěr sterilní bakteriologickou smyčkou, vezměte obsah zkumavky ze dna zkumavky. Barva Gram. Clostridiums jsou velké Gram (+) tyčinky s nesledovanými terminálními nebo subterminálními spóry.

Práce číslo 7: Schéma alokace čisté kultury anaerobů

Fáze I Studie studovaného materiálu: a) mikroskopie, b) naočkování do 5 zkumavek s médiem Kitt-Tarozzi (ihned po zahřátí na vodní lázni při teplotě t 80 ° C po dobu 15-20 minut a rychlým ochlazením).

Fáze II. Studium kulturních vlastností (povaha změn v prostředí Kitt-Tarozzi) a získání izolovaných kolonií metodou Weinberg (ředění v roztaveném agaru s cukrem, následované umístěním do zkumavek Weyon-Vignale) -

nebo metodou Zeissler (setí s disociací na glukózu -

Fáze III. Studium kolonií. Pád ve středu Kitt-Tarozzi pro hromadění čisté kultury.

Fáze IV. Objevování čisté kultury

a) morfologické a tinktivní vlastnosti - nátěr obarvený Gramem, Hinsem, Ozheshkem;

b) biochemická - „pestrá“ řada, výsev do mléka, na Wilsonově-Blairově médiu atd.,

c) antigenní a toxigenní vlastnosti - u laboratorních zvířat.

Stupeň V Účetní výsledky. Závěr k formuláři.

Práce číslo 8: Studium čisté kultury, oddané

Při provádění UIRS

1. Kulturní vlastnosti:

2. Morfologické a tinktivní vlastnosti v gramovém skvrně:

Otázky pro sebeovládání:

1. Faktory bakteriální agrese.

2. Enzymy v závislosti na substrátu v médiu.

3. Klasifikace enzymů podle směru působení.

4. Použití mikrobiálních enzymů.

5. Prostředí pro identifikaci faktorů patogenity.

6. Složení a účel prostředí ZhSA.

7. Způsoby získání izolovaných anaerobních kolonií.

8. Principy tvorby anaerobních podmínek v prostředí Kitt-Torozzi.

9. Co je to fermentace?

10. Způsob získávání energie z povinných anaerobů.

11. Metody tvorby anaerobních podmínek.

12. Tekutá média pro kultivaci anaerobů.

13. Středa Wilson-Blair.

14. Chemické metody tvorby anaerobních podmínek.

15. V jakých prostředích jsou izolovány anaerobní kolonie?

16. Jak vznikají anaerobní podmínky v mikroaostatu?

17. Konečné produkty rozkladu proteinů.

18. Jak odhalit vznik sirovodíku, indolu, amoniaku?

19. Činidla pro detekci sirovodíku, indolu, amoniaku.

20. Prostředí ke studiu sacharolytických vlastností bakterií.

21. Média obsahující laktózu.

22. Jak vypadají lakové (+) kolonie na prostředí Endo, Levin, Ploskirev?

23. Konečné produkty členění sacharidů.

24. Složení a účel prostředí Rappoport.

25. Rozlišení složky životního prostředí Rappoport.

26. Prostředí pro studium proteolytických vlastností.

27. Vlastnosti povinných anaerobů.

28. Biologické metody tvorby anaerobních podmínek.

29. Fáze II izolace čisté kultury anaerobů.

30. Prostředí pro pěstování anaerobů (tekuté a husté).

31. Chemické metody tvorby anaerobních podmínek.

32. Účel a princip provozu trubek Veyon-Vignal.

33. Jaké bakterie mohou existovat bez kyslíku?

34. Životní prostředí pro pěstování anaerobů.

Jak vznikají anaerobní podmínky v exsikátoru?

36. Složení a použití krevního agaru.

37. Izolace čisté fáze anaerobů.

38. Složení a účel prostředí Zeissler.

39. Jak vznikají anaerobní podmínky ve Fortnerově metodě?

40. Principy anaerobních podmínek v prostředí Kitt-Torozzi.

http://poisk-ru.ru/s23051t3.html
Up